1. أعفان ثمار العنب
Grape disease

2. أعفان الثمار
العفن الحمضى
العفن الرمادى
أخرى

3. أعفان ثمار العنب عفن الأسبرجلس Aspergillus rot
عفن الكلادوسبوريوم Cladosporium rot
عفن الألترناريا Alternaria rot
عفن البنيسيليوم Penicillium rot
العفن الرمادى Grey mould rot

4. Apsergillus niger

5. Aspergillus niger

6. Rhizopus stolonifer

7. Rhizopus stolonifer

8. عفن الكلادوسبوريوم Cladosporium rot
Cladosporium spp.

9. عفن الألترناريا Alternaria rot
Alternaria spp.

10. عفن البنيسيليوم Penicillium rot
Penicillium expansum Penicillium citrinum Penicillium cyclopium

11. بوتريتس

13. Botrytis on Thompson Seedless

14. Botrytis on grapes at arrival

15. What is Botrytis?! Grape  Strawberry Snap beans  Green beans
Widespread fungus
Infect many crops
Grape  Strawberry
Snap beans  Green beans
Melons  Cucumber
Stone fruits  Tomato
Pome fruits Onion & Garlic

18. Botrytis cinerea conidiophores and conidia

19. Gray Mold penetration
Phytopathology 85:

20. Botrytis cinerea conidia germination

21. Botrytis cinerea conidia germination
temperature dependent
low in sterile distilled water
stimulated by pollen
stimulated by leaf or berry exudates

22. Botrytis cinerea sclerotia
commonly found on shoots following early frost damage in the fall

25. Botrytis on Flame Seedless

26. الأصناف Cultivars Flame Seedless Thompson King Ruby Early Superior
Crimson Perlette

27. pH

28. نظافة المزرعة

29. نظم التدعيم Trellising system
T system
Double T, Y & V system
Pergola
Gable system

36. Grape berry split

37. Grape insects (Tuber moth)

38. Grape insects (Tuber moth)

39. Grape insects (Tuber moth)

41. هو رسالة لبدء تطبيق المبيدات
التنبؤ بحدوث المرض
هو رسالة لبدء تطبيق المبيدات
نظام التنبؤ بالمرض النباتى: Thomas et al, 1994
نموذج التنبؤ بالمرض النباتى هو وصف حسابى للتفاعل بين البيئة (ظروف جوية) والعائل النباتى و / أو بيانات المسبب المرضى (متغيراته) والتى تتسبب فى حدوث المرض.

42. Ln (y/(1y)) = b°+b1W+b2WT+b3WT2
(Broome et al., 1995)

43. Weather Station

44. Weather Station sensors next to the clusters

45. Infection vs. Temperature70
cv. Thompson Seedless 60 50 40
Disease incidence, %) 30 20 10 5 10 15 20 25 30
Temperature, °C
Dry inoculation
Wet inoculation

46. Temperature vs Incubation14
cv. Thompson Seedless 12 10 8
Incubation, days 6 4 2 5 10 15 20 25 30
Temperature, ºC
Dry inoculation
Wet inoculation

47. Gray mold temperature vs free water

48. Alex
60-69%
Desert road
56%

49. Gray Mold epidemiological model
canopy
Micro
Environ
irrigation
Grape
light
Gray
mold
temper
nutrition
free water N
relative humidity Ca
inoculum source K
resveratrol
B. cinerea
conidia

50. تهوية Aeration
Canopy orientation
Leaf removal
Bunch orientation

51. Monitoring Botrytis on grape
Time of infection
Density of infection
Distribution of infection
Proposing chemical treatment
Effectiveness of applied chemicals

52. Time of infection
Blooming
Harvest
Postharvest

53. Grape blooming

55. Gray Mold latent infection

56. Time of infection Metreological data Temperature Humidity
Wetting period
Humidity
Humidity

57. Distribution of infection (Farm as a case study)

58. Sampling points

59. Botrytis cinerea RAPD-PCR, isolates from grapes (OPA11)
A. alternata
A. niger
Penicillium
B. cinerea
Plant Disease 83:

60. Sampling time

64. Distribution of infection

65. Analysis of samples Infection % Severity Score (0->10)
Sampling stations
Infection %
Severity
Score (0->10)

66. Botrytis Score No risk 0.0 Very low risk <0.1 Low risk < 1
Medium risk <3
High risk <10
Very high risk >10

67. How to use the system for Evaluation of pesticide application

68. Chemical control Use recommended fungicides.
Use approved fungicide at foreign country.
Concern fungicide resistance.
Concern harvest interval (H.I.).
Concern residues.
Use potassium salts.

70. Griseofulvin on grape

71. Screening of 14 B. cinerea isolates for Griseofulvin production

72. Griseofulvin in Thompson samples

73. Control of Botrytis is sometimes very simple
تهويه

77. Time before precooling
Cool chain
Precooling defects

78. Postharvest SO2 Application as Botrytis Control in Export Grapes

79. Gray Mold canopy management
improved aeration and avoid conditions conducive to infection
leaf removal
shoot thinning
shoot positioning
hedging

80. Gray Mold cluster management
avoid excessive cluster compactness
balance clusters and foliage
cluster thinning
cluster length
cluster density

81. Gray Mold nutrition avoid high nitrogen fertilization
improved potassium uptake
improved calcium content of the fruits

82. Gray Mold fungicide treatments
Timing
bloom
late bloom
preclosure
veraison
preharvest

83. غازثانى أكسيد الكبريت
التطبيق
قبل الحصاد
بعد الحصاد

84. كبريت زراعى
قبل الحصاد
غاز ثانى أكسيد كبريت
بعد الحصاد

85. Gray Mold postharvest control
refrigeration, 0°C
sulfur dioxide, SO2
modified atmosphere

86. Postharvest Control SO2 action
conidia
mycelium

87. Postharvest Control SO2 action
SO2 fumigation kills surface borne spores and prevent subsequent infection of grape in the storage
Latent infections are not control with SO2 fumigation

88. Postharvest Control SO2 activity
concentration
time
temperature

89. SO2 time for 99% control conidia
Crop Protection 11:

90. SO2 control vs concentration
Crop Protection 11:

91. SO2 summary
SO2 may be applied to grapes before cooling, during cooling or after cooling.
SO2 toxicity depends on temperature, concentration and time.
Toxicity to conidia increases about 1.5 to 2 times/each 10 °C rise, 0°C to 20 °C.

92. SO2 application time PRE-PACKAGING POST-PACKAGING COLD STORAGE
fumigation
POST-PACKAGING
SO2 generator pads
COLD STORAGE

93. SO2 pre-packaging fumigation
Objective
to reduce the inoculum, conidia, present on the surface of the berries
to reduced X0

94. SO2 pre-packaging fumigation
when should be used it ?
X0 is high
with gray mold symptoms
disease incidence > 0.5-1%

95. غرفة تبخير بغاز ثانى أكسيد الكبريت00
مروحة شفط أو طرد هواء
بالتة عنب
مروحة شفط
خزان ماء يمتص به الغاز بعد التبخير والتخلص منه
ميزان رقمى
غرفة تبخير بغاز ثانى أكسيد الكبريت
اسطوانة غاز ثانى أكسيد الكبريت

96. SO2 concentration: <0.2% color varieties <0.5% white varieties
Exposure period: min

97. وزن غاز ثانى أكسيد الكبريت = (حجم الفراغ فى غرفة التبخير x تركيز الغاز المرغوب / وزن الغاز الذى يعطى 1م3 عند درجة حرارة هواء الغرفة أثناء المعاملة) + وزن الغاز الممتص بالعبوات

98. حساب حجم الفراغ فى غرفة التبخير = حجم الغرفة - الحجم الكلى لصناديق العنب داخل الغرفة أثناء التبخير.

99. وزن الغاز الممتص فى مواد العبوات = (عدد العبوات x 0. 0002 إلى 0

100. وزن الغاز الممتص بالعبوة الفارغة الموضوع بها العنب أثناء التبخير (كجم)
كرتون
خشب
بلاستيك
تركيز الغاز
نوع العبوة
0.0007
0.0006
0.0005
0.5%
وزن الغاز الممتص بالعبوة الفارغة الموضوع بها العنب أثناء التبخير (كجم)
0.0004
0.0003
0.0002
0.2%

101. وزن الغاز بالكيلو جرام الذى يعطى حجم 1م3
وزن غاز ثانى أكسيد الكبريت الذى يعطى حجم 1 م3
30 ºم
25 ºم
20 ºم
درجة الحرارة
0.388
0.381
0.375
وزن الغاز بالكيلو جرام الذى يعطى حجم 1م3

102. SO2 post-packaging fumigation
when should be used it ?
always when transportation to markets take several days

103. SO2 post-packaging fumigation
Generator Pads
sodium metabisulfite
fast SO2 release
slow SO2 release
fast/slow release

104. حقن الغاز داخل الكرتونة المعبأة

105. SO2 injection

106. SO2 post-packaging fumigation
Generator Pads
Position of SO2 pads inside the carton box

107. Grape boxes for exportation

108. تأثير وضع رقائق تحرر غاز ثانى أكسيد الكبريت داخل عبوة العنب التصديرية على فعاليته ضد العفن الرمادى على العنب
فعالية المعاملة فى التثبيط (%)
العفن الرمادى
(%)
وضع رقائق تحرر
غاز ثانى أكسيد الكبريت
74.8
3.5
رقائق مزدوجة فوق عناقيد العنب
52.2
6.64
رقائق مزدوجة أسفل عناقيد العنب
58.4
5.78
رقيقة سريع أسفل عناقيد العنب
وأخرى بطيئة أعلى العناقيد
13.9
مقارنة

109. SO2 post-packaging fumigation
Advantage of using SO2
Killing fungal spores (Botrytis and other fungi
Keeping the green color of bunch stem and pedicles
Precautions of using SO2
Bleaching

110. Cautions for use of grapes guards 1
Cautions for use of grapes guards 1.- Before using Grape Guards from the last season be sure that they have not been expired. 2.- Unused Grape Guards can be used the following season if they have been stored in the undamaged sealed polyethylene bags and in a dry cool area. 3.- If grapes with Dual and Slow Relese Grape Guards are allowed to warm up, excess of sulphur dioxide is released. This can damage the grapes and cause undesirable flavors, and also it increases the SO2 residue level. 4.- The 0ºC (32ºF) refrigeration must be permanent, because the sudden increase of temperature causes damage to the fruit, and also could cause a high increment of the growth rate of the Botrytis cinerea fungi. 5.- Representative boxes of grapes must be regularly inspected while in storage, specially if it exceeds the suggested period for the utilized type of Grape Guard.

111. New approaches Modified atmosphere Biocontrol Other Fumigants than SO2
New fungicides
Rapid detection of B. cinerea
Forecasting using Metreological data

112. Thank you